- Oggetto:
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Modulo di biologia cellulare - sdm
- Docente
- Silvia De Marchis
- Corso di studio
- [f008-c202] laurea spec. in scienze biomolecolari - a torino
- Anno
- 1° anno
- Tipologia
- Di base
- Crediti/Valenza
- 1,5
- SSD attività didattica
- BIO/06 - anatomia comparata e citologia
- Tipologia unità didattica
- modulo
- Insegnamento integrato
- Laboratorio di Biochimica e Biologia Cellulare (non attivato nell'a.a. 2009/2010) (S8094)
- Oggetto:
Sommario insegnamento
- Oggetto:
Obiettivi formativi
Il modulo si propone di introdurre gli studenti allo studio di problematiche di base di biologia cellulare nellambito della neurobiologia attraverso lutilizzo di modelli in vitro. Saranno forniti elementi teorici e pratici per la caratterizzazione e luso sperimentale di linee cellulari e di colture primarie cellulari ed organotipiche.
Il modulo sarà svolto con la collaborazione del Dott. Andrea Messina- Oggetto:
Risultati dell'apprendimento attesi
Alla fine del corso gli studenti dovranno aver acquisito unesperienza teorico-pratica in alcuni metodi di base utilizzati nella ricerca. Avranno acquisito maggior competenze nel campo dellutilizzo di colture cellulari. Gli studenti dovranno aver maturato unesperienza pratica di progettazione e realizzazione di un protocollo sperimentale.- Oggetto:
Programma
Il corso è organizzato in 2 ore di lezione teorica introduttiva e 20 ore/studente di esperienza di laboratorio. Gli studenti frequenteranno il laboratorio suddivisi in tre turni (ciascuno composto al massimo da 9 studenti). All'interno di ciascun turno i 9 studenti saranno suddivisi in tre gruppi di lavoro.
La frequenza del laboratorio sarà così organizzata:
TURNO1-laboratorio dal 12 al 16 gennaio
TURNO2-laboratorio dal 19 al 23 gennaio
TURNO3-laboratorio dal26 al 30 gennaio
PROGRAMMA
LUN
MAR MERC GIOV VEN 14-18Passaggio cellule da 2 Petri 10cm subconfluenti. -polilisinare vetrini -Staccare le cellule -Conta -Semina su 2 PETRI da 10cm 2.500.000 cells/petri10 cm in 10% siero -Allestimento 2 VETRINI per IFL (12.500cells/petri 3.5 1 in SF medium 1 in 10% siero) Mattino Trasfezione -valutare confluenza cellule-staccare le cellule -piastrare su 4 piastre da 6 in OPTIMEM(2 Acreb ires GFP, 2 GFP) + una di linea 10cm-preparare mix trasfezione -trasfettare Reazione IFL Fissare i vetrini- reazione parte I 10-11Cambio terreno (10%siero) con lavaggio in PBS Osservazione cellule mantenimento linea 14-19Boyden su cellule trasfettate(si uniscono le cellule dei tre gruppi- Ciascun gruppo prepara un terreno: BDNF, HGF o 10% siero) Fissare le petri trasfettate – colorazione DAPI A turno i tre gruppi:1)Analisi vetrini IFL Neurolucida con acquisizione immagini 2)Conta efficacia trasfezione al microscopio rovesciato stanza colture Sviluppo Boyden (dopo 3 ore)Tagliare le membrane a metà 14-18Conta Boyden al microscopio Elaborazione dati Pomeriggio Sviluppo reazione IFL Cambio terreno trasfettate (tra 4-6 ore da inizio) Testi consigliati e bibliografia
- Oggetto:
- R.Ian Freshney, Culture of Animal Cells, 3rd edition
G.Banker & K.Goslin, Culturing Nerve Cells, 2nd edition
Fundamental Techniques in Cell Culture. A laboratory handbook. ECACC_Sigma, 2001
Jun-Lin Guan, Cell Migration, Developmental methods and protocols, 2005 Humana press - Oggetto:
Note
Tutti gli studenti sono convocati Giovedì 8 Gennaio 2008 ore 14 c/o AULA C per la lezione di introduzione teorica- Registrazione
- Chiusa
- Apertura registrazione
- 01/03/2020 alle ore 00:00
- Chiusura registrazione
- 31/12/2022 alle ore 23:55
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